western blot 内参为什么总是显不出内参

与你的目的蛋白一样,用beta actin的一抗和相应二抗,做出 beta actin 的条带来,一般来说,如果你的蛋白质上样量已经用BCA或BRADFORD法定量后统一上样的,那么你的beta actin 条带亮度应该是一致的,如果不一致,则可能是蛋白定量过程中的误差所致,应该重新定量以统一上样量,只有在beta actin 一致的情况下,才能验证上样量的一致,才可以对目的蛋白亮度作出比较,在此基础上,也可以用同一样本分别得出来的目的蛋白条带和beta actin 条带亮度比值作为该样本的蛋白表达量,这样更精确,再一次校正了实验误差

标题: 【求助】western-blot的内参为什么都做不好?

【求助】western-blot的内参为什么都做不好?


最近几天刚开始做western-blot,昨天做b-actin(43KD),有几个样本出来阳性带,位置也对,但都非常弱,照相都照不下来(用凝胶成像系统)。今天为了验证一下总蛋白的浓度,进行了考马斯亮蓝的染色,结果都还可以。我想请教一下各位高手:难道我提取的蛋白真的浓度过低?每次电泳上样前都需要测定蛋白浓度吗?
另外,我的一抗和二抗的浓度分别是1:500和1:1250,不知道是否合适?还需要调整吗?


1.最好是测下浓度,不测也没关系
2.你的一抗和二抗要按说明书稀释.我觉得你的二抗浓度过高,1:5000试试


我的一抗是中杉的产品,是进口分装的,说明书上建议做WB时稀释比例为1:100到1:1000。另外二抗的比例是实验室老师建议的。
二抗你们一般稀释多少倍?


另外我还想请教一个问题:我是组织提取蛋白,用的蛋白提取液(200-300ul,视组织大小而定)+5ul蛋白酶抑制剂(浓度是2mg/500ul),我用的蛋白酶抑制剂难道过少?从而提取的蛋白量少?

如果你用北京中衫的二抗,二抗浓度高了,
只是二抗体浓度浓度高了,你可以用1:3000 到1:10000,
另外信号比较弱,你可以ECL显光,相当灵敏, 你可以试一下


除了楼上战友说的二抗问题外,我提几点:1.如果蛋白浓度没问题(我觉得你的蛋白提取没有什么问题),可以转完膜以后用丽春红染色,看一下转膜的效果如何,如果染色后条带清晰,可排除转膜的原因;2.可以考虑适当降低封闭液的浓度,有时按“分子克隆”上5%脱脂奶就是做不出来。我的内参(43KD,羊源)是在0.5%浓度上做出来的;3.还可以考虑三抗系统,即二抗采用生物素标记,三抗采用辣根酶标记,其灵敏度比二抗系统高一个数量级。我实验中用二抗做不出来的指标用三抗都做出来了。


我用的二抗是中杉的,效价是1:3000。你可以试试。还有内参很容易出来的,是不是你的蛋白样品出现了问题啊。楼上的排除法很好的,谢谢。

其实,中杉代理Santa的B-actin并不好用,但是它代理国内一家医院自产的actin很好用的,大概100ul不到500RMB,我们实验室基本都改用国产的了!

我要回帖

更多关于 western blot 内参 的文章

 

随机推荐